Этиология и эпизоотология желудочно-кишечных болезней новорожденных телят

Холодный сырой  воздух, сквозняки в родильных  отделениях, длительные затяжные роды, слабые потуги, невозможность облизывания  теленка коровой при родах на привязи, отсутствие возможности его обтирания, массажа, обсушивания ведёт к снижению температуры тела новорожденного телёнка до 32…33° С (гипотермия), при этом снижается усвоение иммуноглобулинов из молозива. 

Нарушения срока  и правил выпойки молозива телятам: 

-   несвоевременное  (задержка на 2…3 часа и более)  выпаивание молозива первого  удоя; 

-   ограничение  частоты (менее 3 раз в день) выпойки и необходимого количества  скармливаемого молозива; 

-   использование  молозива от больных маститом коров; 

-  быстрое  (форсирование) выпаивание молозива  из сосковой поилки с большим  отверстием или ведра; 

-  использование  молозива, контаминированного различными  загрязнителями; 

-  выпойка  охлажденного ниже 30° С  молозива. 

Указанные нарушения  приводят к гипоиммуноглобулинемии (иммунодефициту). 

Заболеваемость  коров послеродовыми болезнями  и (или) маститом.

При гнойно-воспалительных процессах в органах репродуктивной системы происходит нарушение микробиоценоза родовых путей засчет чрезмерного  увеличения численности патогенных и токсигенных микроорганизмов, которые контаминируют телят при рождении и являются причиной развития у них дисбизных состояний и ранних диарей. У новорожденных телят, полученных от переболевших маститом (в том числе и субклиническим) коров в период запуска, как правило, регистрируют острые кишечные расстройства, причиной которых являются токсины стафило- и стрептококков. 

 ДИАГНОСТИКА 

Диагностику желудочно-кишечных болезней телят осуществляют на основании  анализа эпизоотологических данных, клинических признаков, патолого-анатомических изменений и результатов лабораторных (вирусологических, бактериологических, серологических, микологических, токсикологических, копрологических, иммунологических и других) исследований. 

Учитывая, что  желудочно-кишечные болезни телят независимо от их этиологии во многом сходны по клиническим признакам и патологоанатомическим изменениям решающее значение в постановке этиологического диагноза имеют лабораторные исследования патологического материала. Лабораторные исследования предусматривают:  

-   отбор  и пересылку патологического  материала в лабораторию или  научно-исследовательское учреждение; 

-   подготовку  патматериала для исследований; 

-   выделение  возбудителей (антигенов), их идентификация  и ретроспективнуя диагностика. 

Для лабораторных исследований отбирают патологический материал от больных и убитых с  диагностической целью животных в первые часы клинического проявления болезни, не подвергавшихся лечению  антибактериальными препаратами, или  от павших телят сразу после их гибели: фекалии, ректальные смывы или соскобы слизистой оболочки прямой кишки от больных; кусочки пораженных легких, участков тощей и подвздошной кишок (при исследовании на корона -, парво- рота- и энтеро- и вирусную диарею), сычуг, трубчатую кость, головной мозг, а также мезентериальные лимфоузлы, почки, селезенку, кусочек печени с желчным пузырём, грудную или брюшную жидкость. Кроме того, для исследований берут сыворотку крови животных реконвалесцентов (парные − с интервалом 2 недели или однократные пробы, отобранные не ранее 10-14 дней после переболевания). Фрагменты различных отделов кишечника (длиной 8-12 см) для вирусологических исследований перевязывают с обоих концов лигатурой, сохраняя его содержимое, и помещают в отдельные банки из тёмного стекла, содержащие раствор Хенкса или среду для тканевых культур (рН 7,2-7,4) с антибиотиками (пенициллин и стрептомицин по 1000 Ед/мл, канамицин или нистатин по 50 Ед/мл). Пробы фекалий при жизни животных отбирают непосредственно из прямой кишки во время дефекации или с помощью стерильных тампонов. Тампоны с ректальными смывами помещают в пробирки или пенициллиновые флаконы с раствором Хенкса или среды для тканевых культур с антибиотиками. Содержимое тонкого кишечника от убитых с диагностической целью животных отбирают с помощью шприца толстой иглой через кишечную стенку. Посуду с патологическим материалом герметически укупоривают, наклеивают этикетку с указанием вида отобранного материала, возраста животного, даты, названия и адреса учреждения. К патологическому материалу, направляемому для исследований, прилагают сопроводительную записку. Патологический материал доставляют в ветеринарную лабораторию для исследований не позднее 6 ч с момента отбора, в противном случае его замораживают и в замороженном виде доставляют. Подготовку патматериала к исследованиям, направленным на выделение и идентификацию вирусов (антигенов), бактерий, хламидий, гельминтов, простейших, осуществляют в соответствии с утвержденными методическими указаниями и рекомендациями. 

Определение антибиотикочувствительности  выделенных культур патогенных бактерий проводят в соответствии с «Методическими указаниями по определению чувствительности к антибиотикам возбудителей инфекционных бо­лезней сельскохозяйственных животных». 

  

ПОЛУЧЕНИЕ ЗДОРОВОГО  МОЛОДНЯКА 

Основными требованиями системы получения и сохранения здоровыми новорожденных телят  являются: 

- строгое исполнение  ветеринарно-санитарных и гигиенических  условий в технологии содержания, кормления, ухода за стельными коровами и нетелями; 

          - в помещениях для сухостойных  коров и нетелей поддерживают  санитарный порядок и оптимальные  параметры микроклимата (температурно-влажностный  режим, газовый состав помещения  и др.); 

          - рационы сухостойных коров и нетелей в стойловый период должны быть сбалансированы по энергии, переваримому протеину, макро- и микроэлементам, витаминам, сухому веществу, клетчатке в соответствии с «Нормами и рационами кормления с/х животных» по данным лабораторных исследований; 

  

 Рекомендуется  следующая структура рациона:  сено, травяная мука и травяная  резка  30…35%, сенаж  25…30%, концентраты  25…30%, корнеклубнеплоды 5…6%. Все корма  для стельных животных должны  быть доброкачественными, без поражения  токсическими грибами. Нельзя скармливать сухостойным коровам и нетелям кислый жом, барду, силос с рН ниже 4,3, содержащий масляную кислоту и продукт гниения, сенаж с рН ниже 5,4. Не допускается скармливание кормов, содержащих нитраты и нитриты выше допустимых концентраций. Для животных, имеющих упитанность ниже средней, нормы кормления увеличивают на 15%, а при ожирении коров снижают на 10-20%. 

  

- не реже одного  раза в квартал, а также при  существенных изменениях в составе  рациона и перемене мест содержания  животных проводят систематический контроль состояния обмена веществ у беременных животных путем проведения биохимических исследований крови не менее 5 проб; 

- в летнее  время этих животных обеспечивают  пастбищами и переводят на  лагерное содержание. Стационарные  помещения подвергают ремонту, очистке, дезинфекции и оставляют на санитарный отдых. В пастбищный период для сухостойных коров и нетелей основными кормами должна быть зеленая масса и концентраты. 

Правильная подготовка маточного поголовья к отёлу: подбор родительских пар и их подготовка к осеменению, общая и акушерская систематическая диспансеризация, полноценное по всем элементам кормление, моцион и др. 

Высокий уровень  зоогигиены и санитарии проведения отёлов. 

Стельных коров  и нетелей переводят в предродовой  сектор родильного отделения за 5…7 дней до отёла, предварительно подвергают их санитарной обработке (замывают загрязненные места, дезинфицируют копыта) и исследуют на мастит. Больных подвергают лечению. Коров и нетелей в родильном отделении кормят по рационам сухостойного периода. У животных с признаками приближающихся родов обмывают и дезинфицируют заднюю часть туловища и переводят на предварительно подготовленные, продезинфицированные места в родовом секторе или в родильные боксы. Дежурный оператор родильного отделения после рождения теленка удаляет у него салфеткой или полотенцем слизь из ноздрей, рта и ушей, дезинфицирует пуповину настойкой йода и предоставляет возможность корове облизать теленка. После этого дежурный оператор обмывает и обтирает молочную железу коровы дезинфицирующим раствором, сдаивает в отдельную посуду первые струйки молозива, содержащие повышенное количество микроорганизмов, и уничтожает его. 

Кормление. При  ручной выпойке теленка, после его  облизывания коровой, помещают в  индивидуальную клетку ранее подготовленной секции профилактория или индивидуальные домики-профилактории на открытых площадках. Там, не позднее 1,5-2 часов после рождения, осуществляют первую выпойку молозивом матери из предварительно простерилизованной сосковой поилки. Это обусловлено тем, что наиболее выраженная способность эпителия кишечника абсорбировать иммунологически активные белки молозива сохраняется в первые 5-6 часов после рождения, затем она снижается. Через 24-36 часов и в более поздние сроки белки и клеточные элементы молозива в значительной степени разрушаются секретами, начинающих функционировать пищеварительных желез. 

  

  

  

 Обязательна  дача молозива первого удоя  и только от здоровых матерей  в количестве не менее 5-6 л  в течение первых суток жизни.  Молозиво, оставшееся от первого удоя, как наиболее богатое иммуноглобулинами, можно использовать при последующем кормлении телят. Для обеспечения полноценным молозивом новорожденных телят, полученных от коров с клиническим или субклиническим маститом, в хозяйствах необходимо иметь запас молозива от здоровых высокоудойных матерей. Такое молозиво можно хранить в течение 2-3-х суток при +4 - +8°С. Перед выпойкой его подогревают до 37-38°С в водяной бане с температурой воды не выше 45°С. 

Кормление новорожденных  телят молозивом проводят не менее 3-4 раз в сутки. Материнское молозиво выпаивают телятам в течение семи суток, а затем выпаивают сборное молоко. При подсосном содержании теленок находится с коровой в родильном боксе не менее 1-2 дней или весь молозивный период. В это время коров поддаивают 2-3 раза в день. Затем теленка переводят в секцию профилактория. 

              Контроль иммунного статуса у  телят суточного возраста, а, следовательно,  контроль своевременности получения  ими молозива, можно осуществлять  с помощью простого и информативного пробирочного теста с сульфитом

натрия. Этот метод  позволяет определить уровень иммуноглобулинов в сыворотке крови телят. С  этой целью готовят 14%-, 16% и 18%-ные  растворы сульфит натрия. В пробирки Флоринского разливают по 1,9 мл каждого из трех растворов и добавляют по 0,1 мл исследуемой сыворотки крови. Пробирки встряхивают и оставляют при комнатной температуре в течение одного часа. В случае положительной реакции в пробирке появляется помутнение или выпадает осадок. Учет результатов проводят, пользуясь таблицей. Коррекция иммунологического статуса осуществляется дополнительной дачей молозива, иммунных сывороток, иммуноглобулиновых препаратов, а также средств с иммунотропной активностью (иммуномодуляторы, иммуностимуляторы). 

Таблица. Определение  сывороточных иммуноглобулинов по результатам  преципитации сульфитом натрия

Уровень иммуноглобулинов, мг/мл 

Концентрация  сульфита натрия, % 

14 

16 

18 

Оптимальный уровень  иммуноглобулинов (более 15 мг/мл) 

+ 

+ 

+ 

Пониженный уровень иммуноглобулинов (5-15 мг/мл) 

- 

+ 

+ 

Очень низкий уровень  иммуноглобулинов (ниже 5 мг/мл) 

- 

- 

+ 

Отсутствие иммуноглобулинов 

- 

- 

- 
 

- − отсутствие  помутнения (преципитата); + − наличие  помутнения (преципитата). 

  

              Новорожденным телятам с третьего-пятого  дня жизни через 1,5-2 часа после кормления молозивом выпаивают кипяченую воду либо чай из лекарственных трав, или настой из хорошего сена, которые не должны быть выше или ниже 20-35°С. С десятого  дня телятам дают обычную питьевую воду и приучают к поеданию грубых и кон­центрированных кормов. Поилки и другую посуду после каждого кормления телят моют и дезинфицируют, а резиновые соски  кипятят.