Пастереллез птиц

В мазках из патологического материала и  особенно крови (ценно для дифференциации от тифа, чумы и других болезней) при  пастереллезе находят короткие с  закругленными краями овоидные палочки  с выраженной биполярностью. Обнаружение  в мазках биполярных овоидов - ценный диагностический признак, но, кроме  пастерелл, биполярную окраску могут  давать и другие бактерии (E. Coli и  д.р.), в то же время в некоторых  случаях пастереллы не дают четкой биполярности при окраске. Необходимо также строго соблюдать технику  окраски.

Учет результатов  биопробы проводят в срок до двух-трех дней предварительный и окончательный  не позже 5 дней после гибели опытных  животных (птиц). Отрицательный ответ - после 10-дневного наблюдения за подопытными  животными (птицами). Важно правильно  оценить рост культуры на МПА, так  как это позволяет судить об антигенных и вирулентных свойствах изучаемой  культуры еще до проведения точных исследований. Морфологию колоний целесообразно  учитывать так, как указано выше (S-формы, M-формы, R-формы). [2]

Гибель животных, зараженных суспензией патологического материала из паренхиматозных органов или чистой культурой возбудителя, в зависимости от вирулентности штамма наступает в разные сроки. Достаточно вирулентные штаммы вызывают гибель голубей, кур, белых мышей чаще в течении первых суток, редко- двух суток.

Павших подопытных животных и птиц вскрывают, делают посевы из крови сердца, паренхиматозных  органов на простые среды, готовят  и окрашивают мазки, микроскопируют их с последующей идентификацией культуры.

У подопытных животных и птиц при патологоанатомическом  исследовании обнаруживают типичные для  пастереллеза признаки, особенно у  птиц; у белых мышей - воспалительный очаг на месте инъекции, отечности  подкожной клетчатки и мускулатуры, кровоизлияний на эпикарде, увеличенные  и отечные лимфатические узлы.

Изолированные и идентифицированные культуры пастерелл  необходимо прове-рять на патогенность и вирулентность, которая у различных  штаммов неодинакова.

Особенно  важно вирулентность выделенных штаммов установить у птиц-пасте-реллоносителей, имеющих большое эпизоотическое значение. С этой целью подопытных птиц или белых мышей заражают подкожно или внутримышечно разными  дозами изучаемого штамма и в результате определяют среднюю летальную дозу, при которой погибает 50% птиц или  белых мышей, взятых в опыт (LD50), при разных способах заражения. Голубей или цыплят целесообразнее заражать внутримышечно, а белых мышей подкожно, различными разведениями пастереллезных культур.[2]

Серологическая  диагностика:применяется реакция агглютинации. Ценные данные реакции агглютинации получают при идентификации пастерелл и установлении их различных серотипов, в особенности если в реакции используют высокоактивные сыворотки, полученные гипериммунизацией кроликов или крупного рогатого скота штаммами пастерелл, выделенными от птиц.

РА ставят по общепринятой методике в пробирках  на формалинизированном фосфатном  буфере с разведением сывороток 1:10, 1:20 и т.д. дозировка компонентов  для реакции такова: 0.5 мл сыворотки + 1 мл взвеси антигена. Реакцию учитывают  после инкубирования в течение 18 часов при 370 и выдерживания в  термостате в течение 4-5 часов при  комнатной температуре. Контролями антигена служат буферный раствор и  нормальная кроличья сыворотка. Антиген  считается непригодным для реакции, если в одном из контролей наблюдают  агглютинацию.[2]

Аллергическая диагностика

Для прижизненной диагностики хронически протекающего пастереллеза птиц микробоносительства  этого микроба некоторыми авторами были испытаны аллергические препараты, но положительных результатов в  производственных условиях не было получено. В последнее время вопросы аллергической диагностики пастереллеза птиц не изучаются, и в связи с ежегодной заменой поголовья маточных стад вновь выращенным молодняком вряд ли в этом есть необходимость.[2]

В данном случае диагноз был поставлен  комплексно, с учетом эпизоотологических (заболевания вызвано снижением естественной резистентности у птицы. Способствующими факторами возникновению болезни явилось проведение повторной ревакцинации птиц вирусвакциной  сухой  против инфекционного бронхита кур из штамма "АМ", а также неполноценное кормление, недостаток в рационе витаминов и минеральных элементов, что привело к снижению иммунитета у молодняка птиц), патологоанатомических (геморрагический диатез: точечные кровоизлияния под эпикардом, в мышце сердца, под серозными и в слизистых оболочках, на коже, подкожной клетчатке, яичнике; мелкие некротические узелки в печени, катарально-геморрагический дуоденит) данных, клинических признаков (цианоз гребня и бородок, общее угнетение. Выделение помета зеленого цвета с примесью крови.  Отмечается повышенная жажда и повышение температуры до 43⁰С)  и лабораторных исследований (выделение из патматериала культуры со свойствами характерными для возбудителя и наличия у него патогенности для лабораторных животных).

9. Дифференциальный диагноз.

Важное значение имеет правильная идентификация  выделенной культуры и дифференциация ее от сходных микроорганизмов ( Приложение, таблица 1), главным образом от возбудителя пуллороза, тифа, паратифа водоплавающей птицы, листериоза.[2]

При постановке диагноза необходимо пастереллез птиц дифференцировать от других заболеваний. При сверхостром и остром течении нужно отличить пастереллез от чумы, тифа, спирохетоза, острых отравлений, иногда от туберкулеза, листериоза, пуллороза, псевдотуберкулеза, сальмонеллезов , колибактериоза. Хронический генерализованный или локальный пастереллез необходимо дифференцировать от туберкулеза, микоплазмоза, заразного насморка, авитаминоза А, плеврита, перикардита, артритов непастереллезной этиологии. При постановке диагноза надо помнить о возможности смешанной инфекции у птиц (пастереллез и листериоз, пастереллез и оспа, пастереллез и чума, пастереллез и пуллороз, пастереллез и туберкулез и т.д.).

Надежная  дифференциация пастереллеза от других болезней возможна лишь при оценке комплекса данных по эпизоотологии, клинической и особенно патологоморфологической  картине, бактериологическому и  другим лабораторным методам исследования. Причем для дифференциальной диагностики от других болезней акцент должен быть сделан на результаты бактериологического исследования, от других - клинического и патоло-гоморфологического, эпизоотологческого или иных методов исследования.

Чума. Основными отличительными признаками ее от пастереллеза является то, что чумой болеют только куриные, а пастереллезом - все виды птиц. При пастереллезе не бывает параличей ног и крыльев и на вскрытии не обнаруживают (за редким исключением) характерным для чумы кровоизлияний на границе железистого и мускульного желудков. Микроскопическим исследованием при пастереллезе обнаруживают биполярно окрашенные овоиды в мазках крови и из органов, также характерный рост культуры на средах. При подкожном заражении кур, уток и белых мышей можно уточнить диагноз - при содержании в патологическом материале чумного вируса погибнут в течение 12-48 часов только куры, а при содержании в материале возбудителя пастереллеза погибают и утки, и мыши.

Тиф птиц отличается более медленным течением, меньшей смертностью, силь-ным увеличением селезенки, отсутствием геморрагий. Окончательный дифференци-альный диагноз ставят по результатам микроскопического исследования мазков крови (обнаружение биполярно окрашенных овоидов), бактериологического исследования и постановки РА со специфическими для сальмонеллезов сыворотками.

Спирохетоз  птиц отличается от пастереллеза тем, что при исследовании мазков крови под микроскопом при спирохетозе находят спирохеты, а при пастереллезе биполярно окрашенные овоиды. Различны также результаты бактериологического исследования, биопроб. При спирохетозе не находят картину сепсиса на вскрытии. Распространение этой болезни ограниченно (в зоне с теплым климатом).

Листериоз. В дифференциальном диагнозе от листериоза, кроме эпизоотологиических данных, решающее значение имеет биопроба: выделенную культуру наносят на конъюнктиву морской свинки (или кролика) - листерии конъюнктивит и кератит. Необходимо иметь ввиду возможность смешанной инфекции подострого или хронического пастереллеза и листериоза.

Туберкулез. Некоторые паталогоанатомические признаки хронического генерализованного пастереллеза могут напоминать туберкулез, например, некротические поражения в печени, легких, селезенке и т.д. решающим для дифференциального диагноза должно быть микроскопическое исследование мазков-отпечатков из органов с окраской их на биполярность и по Циль-Нильсону на туберкулез и результаты бактериологического исследования и биопробы.

Псевдотуберкулез  птиц по некоторым клиническим признакам сходен с пастереллезом, особенно при септическом течении, а при подостром и хроническом течении - по патологоанатомическим изменениям в печени, легких, кишечнике и т.д. точно отдефференцировать его можно лишь по результатам полного бактериологического исследования. Одного микроскопического исследования недостаточно, так как возбудитель псевдотуберкулеза часто окрашивается биполярно обычными анилиновыми красками.

Колибактериоз. При дифференциальной диагностике пастереллеза у молодняка птиц нужно иметь в виду еще колибактериоз, особенно септическое его течение. В дифференциальном отношении главным будут результаты бактериологического исследования - выделение чистой культуры возбудителя и его идентификация, а при вскрытии - увеличение селезенки при колибактериозе, а также и некоторые эпизоотологиические данные (поражение только молодняка раннего возраста при колибактериозе и птицы всех возрастов при пастереллезе и т.д.)

Пуллороз. У цыплят старшего возраста пастереллез протекает несколько сходно с пуллорозом. Дифференциальную диагностику нужно проводить, учитывая эпизоотологические данные, клиническую и патологоанатомическую картину, особенно результаты бактериологического исследования с использованием «пестрого ряда».

Паратиф. При постановке диагноза, нужно иметь в виду еще и паратиф, при котором на вскрытии также могут быть обнаружены некротические очаги в печени, энтерит, гиперемия, а иногда и кровоизлияния на слизистой оболочке кишечника и сердце, фиброзная пневмония, характерные для пастереллеза. Полное бактериологическое исследование с обязательным изучением биохимических свойств возбудителей дает возможность отличить эти болезни.

Микоплазмоз. В дифференциальном отношении от микоплазмоза основное значение имеет полное гистологическое исследование. В легочной ткани при микоплазмозе обнаруживают лимфоидную ткань гиперплазию фолликулярного типа, экссудативную пневмонию с гигантскими клетками в экссудате. В срезах верхних дыхательных путей и бронхов находят гиперплазию и десквамацию мерцательного эпителия слизистых оболочек, трубчатое удлинение слизистых желез эпителия. Обнаруживают также, особенно в трахее, «папиломатозные» выросты слизистой оболочки. Для пастереллеза характерны изменения в легких в виде некротизации стенки сосудов, периваскулярной и интерстициальной ткани. Только по дифтеритическому воспалению воздухоносных мешков дифференцировать эти болезни нельзя, так как эти изменения одинаковы, но при микоплазмозе они встречаются чаще. В случаях обнаружения на вскрытии крупозного воспаления легких отличить микоплазмоз от хронического пастереллеза по патологоморфологическим изменениям невозможно. Некоторое значение может иметь бактериологическое исследование с биопробой, но надо иметь в виду возможное пастереллоносительство у кур в период вспышки микоплазмоза, особенно в хозяйствах, где пастереллез встречается стационарно и где возникает необходимость в дифференциации этих двух весьма сходных на вскрытии болезней (микоплазмоз и хронический пастереллез с поражением органов дыхания). Возможно и смешанное течение этих двух болезней.

Колисептицемия. Нередко в хозяйствах, неблагополучных по пастереллезу, распространен не только микоплазмоз, но и колисептицемия, поэтому при диагностировании хронического пастереллеза нужно исключить обе эти болезни, для чего исследуют только что убитую птицу, типируют выделенную культуру в РА со специфическими колибактериозными сыворотками и ставят биопробу на 30-60-дневных цыплятах.

Заразный  насморк. Сходство усиливается в случаях высокой вирулентности возбудителя заразного насморка и при распространении воспалительного процесса на трахею, бронхи, легкие и воздухоносные мешки. Заразный насморк в отличии от хронического пастереллеза распространяется значительно быстрее, чаще отмечается серозно-фибринозный конъюнктивит. Бактериологическим исследованием при пастереллезе изолируют культуру пастерелл, чаще с пониженной вирулентностью, а при вирусологическом исследовании - вирус.

Стрептококкоз. Острый стрептококкоз может протекать по типу геморрагической септицемии, а хронический - с поражением бородавок и подошв. Эти признаки сходны с таковыми при пастереллезе. Выделение при бактериологическом исследовании стрептококков и проверка их вирулентности на цыплятах позволяют уточнить диагноз.

Дифференциальная  диагностика хронического пастереллеза и его локализован-ных форм (ринит, артрит, конъюнктивит и т.п.) от аналогичных  незаразных болезней не вызывает трудностей.

10. Прогноз.

Прогноз благоприятный, однако у переболевших птиц образуется нестерильный иммунитет. Птицы остаются пастереллоносителями, поэтому вся больная птица подвергается убою.

11. Лечение.

Птиц больных  пастереллезом не лечат.  Они  подлежат выбраковке.

У переболевших животных и птиц образуется нестерильный иммунитет. После вакцинации птицы  могут оставаться пастереллоносителями. Специфическая терапия при пастереллезе птиц не разработана.[16]

Для лечения  и профилактики используют вакцины, антибиотики, сульфаниламиды и другие препараты.[12]

Иммунопрофилактика  пастереллезов занимает одно из основных мест в системе противоэпизотологических мероприятий. В борьбе с пастереллезам птиц ветеринария располагает большим арсеналом вакцин. Против пастереллеза птиц применяют следующие вакцины:

Из живых  авирулентных вакцин наибольшее распространение  получили  вакцины  Краснодарской  НИВС из штаммов "АВ" и "К" (I-я  и II-я). Это авирулентные вакцины  из пастеровских штаммов. Их применяют  в угрожаемых и неблагополучных  по пастереллезу хозяйствах вначале вспышки заболевания. Кур вакцинируют в дозе 0,5 мл  подкожно  в  области верхней трети шеи вначале первой вакциной, а затем через 5-7 дней с другой стороны шеи второй вакциной.